КІСТКОВИЙ МОЗОК ТВАРИН: БУДОВА І ФУНКЦІЇ, ДОСЛІДЖЕННЯ ТА ОЦІНКА
DOI:
https://doi.org/10.37000/abbsl.2021.100.12Ключові слова:
кістковий мозок, гемопоез, мієлограма, ссавці, птахи, рептилії, амфібії, рибиАнотація
Огляд присвячений кістковому мозку хребетних тварин, опису його будови, функцій, методів дослідження та оцінки. Кістковий мозок є головним кровотворним органом дорослих тварин. Він розташований у центральних каналах та епіфізах трубчастих кісток, хребцях та плоских кістках. Абсолютну більшість його клітинного складу являють гемопоетичні клітини. Крім них він містить адипоцити, фібробласти, остеобласти і остеокласти, які утворюють ретикулярну строму. Основною функцією кісткового мозку є гемопоез. Як первинний лімфоїдний орган він відіграє важливу роль у розвитку адаптивного імунітету. Наступна функція - продукція остеобластів, остеокластів і остеоцитів, які формують кістку. Ще одна функція – продукція адипокінів. Дослідження кісткового мозку проводять для діагностики гемопоетичних неоплазій, а також у випадках виразних змін картини периферійної крові (стійка цитопенія). Основне дослідження кісткового мозку – визначення мієлограми – співвідношення різних ядерних клітин. Вираховують М:Е відношення (мієлоїдні:ядерні еритроїдні клітини), індекс мієлоїдного дозрівання (ММІ), індекс еритроїдного дозрівання (ЕМІ) та ін. В огляді наведені типові мієлограми собаки, кота, коня і ВРХ. Крім детальної характеристики кісткового мозку ссавців, в огляді описано кістковий мозок (гемопоез) інших хребетних – птахів, рептилій, амфібій та риб.
Посилання
СM, Catafal LK. Evaluation of bone marrow microenvironment could change how myelodysplastic syndromes are diagnosed and treated Cytometry A. 2018;93(9):916-928. DOI: 10.1002/cyto.a.23506.
Dabrowski Z, Z, I S, D D, Witkowska-Pelc E, Krzysztofowicz E, K. Hematopoiesis in snakes (Ophidia). Folia Histochem Cytobiol. 2002;40(2):219-20.
L, J. Colony-stimulating factor-1-responsive macrophage precursors reside in the amphibian (Xenopus laevis) bone marrow rather than the hematopoietic subcapsular liver. J Innate Immun. 2013;5(6):531-42. DOI: 10.1159/000346928.
Grushko MP. Red bone marrow of the lake frog (Rana ridibunda) and the nimble lizard (Lacerta agilis). Morfologiia. 2010;137(1):31-4. [ Russian]
Harvey JW. Veterinary hematology. A diagnostic guide and color atlas. St Louis, Mo: Elsevier Saunders, 2012.-360+VII p.
Hassnain Waqas SF, A, AC, G, M, S, M, T. Adipose tissue macrophages develop from bone marrow-independent progenitors in Xenopus laevis and mouse. J Leukoc Biol. 2017;102(3):845-855. DOI: 10.1189/jlb.1A0317-082RR.
Horowitz MC, Berry R, Holtrup B, Sebo Z, Nelson T, Fretz JA, Lindskog D, Kaplan JL, Ables G, Rodeheffer MS, Rosen CJ. Bone marrow adipocytes. Adipocyte. 2017;6(3):193-204. DOI: 10.1080/21623945.2017.1367881.
Hynes JP, Hughes N, Cunningham P, Kavanagh EC, Eustace SJ. Whole-body MRI of bone marrow: A review. J Magn Reson Imaging. 2019;50(6):1687-1701. DOI: 10.1002/jmri.26759.
Kravtsiv RY, Romanishin VP, Kravtsiv YuR. Veterinary hematology. Lviv: TeRus, 2001.-328 p. [Ukrainian].
.Nagai H, Shin M, Weng W, Nakazawa F, Jakt LM, Alev C, Sheng G. Early hematopoietic and vascular development in the chick. Int J Dev Biol. 2018;62(1-2-3):137-144. DOI: 10.1387/ijdb.170291gs.
Schwartz D, Guzman DS, Beaufrere H, Ammersbach M, Paul-Murphy J, Tully TN Jr, Christopher MM. Morphologic and quantitative evaluation of bone marrow aspirates from Hispaniolan Amazon parrots (Amazona ventralis). Vet Clin Pathol. 2019;48(4):645-651. DOI: 10.1111/vcp.12799.
Simonian GA, Khismutdinov FF. Veterinary hematology. M.: Kolos, 1995.-255 p. [Russian].
Sukmansky OI., Gorokhivsky VN., Kononenko AE. Apelin and adipokine`s system. Innovatsii v stomatoloigii.2016; (4):30-35. [Russian].
Sukmansky OI., Gorokhivsky VN., Shukhtina IN. New adipokines ande metabolic syndrome. Stomatological aspects. Innovatsii v stomatoloigii.2017; (1):15-19. [Russian].
Sukmansky OI., Ulyzko SI. Veterinary hematology. Odesa:BMB, 2009.-168 p.
Sukmansky OI., Ulyzko SI. Bone marrow investigation in animals. Zbirnyk materialiv I haukovo-praktychnoi konferentsii NPP ta molodykh naukovtsiv. Odesa, 2021.-p.94-95 [Ukrainian].
Travlos GS. Normal structure, function, and histology of the bone marrow Toxicol Pathol. 2006;34(5):548-65. DOI: 10.1080/01926230600939856.
Vishnyakov A, D, Timofeev D, Kvan O. Evaluation of bone marrow hemopoiesis and the elemental status of the red bone marrow of chickens under introduction of copper to the organism Environ Sci Pollut Res Int . 2020;27(14):17393-17400. DOI: 10.1007/s11356-020-08161-0.
Weiss DJ., WardropKJ. (Eds). Schalm`s Veterinary Hematology (6th ed.). Singapore: Wile-Blackwell, 2010.-1206+XXIII p.
Yaparla A, L. Isolation and culture of amphibian (Xenopus laevis) sub-capsular liver and bone marrow cells . Methods Mol Biol. 2018;1865:275-281. DOI: 10.1007/978-1-4939-8784-9_20.
Yaparla A, Reeves P, L. Myelopoiesis of the amphibian Xenopus laevis is segregated to the bone marrow, away from their hematopoietic peripheral liver. Front Immunol. 2020;10:3015. DOI: 10.3389/fimmu.2019.03015.
